 
 中国农学通报 ›› 2024, Vol. 40 ›› Issue (3): 87-94.doi: 10.11924/j.issn.1000-6850.casb2022-0789
收稿日期:2022-09-23
									
				
											修回日期:2023-01-15
									
				
									
				
											出版日期:2024-01-17
									
				
											发布日期:2024-01-17
									
			通讯作者:
					作者简介:韩进财,男,1995年出生,河南开封人,硕士在读研究生,研究方向:杂草生理学。通信地址:410125 湖南省长沙市芙蓉区远大二路892号 湖南省农业科学院生物技术所杂草室,Tel:18437923617,E-mail:1300587134@qq.com。
基金资助:
        
               		HAN  Jincai1( ), LUO  Dingfeng1, BAI  Haodong2, LI  Zuren1(
), LUO  Dingfeng1, BAI  Haodong2, LI  Zuren1( )
)
			  
			
			
			
                
        
    
Received:2022-09-23
									
				
											Revised:2023-01-15
									
				
									
				
											Published-:2024-01-17
									
				
											Online:2024-01-17
									
			摘要:
旨在克隆稗草对羟基苯基丙酮酸双氧化酶(HPPD)基因为探究其基因功能提供基础,从而更好地开发除稗剂。以稗草叶片为材料,用同源克隆和cDNA末端快速克隆(RACE)技术克隆EcHPPD基因序列,用生物信息学软件分析其特征。EcHPPD基因的编码序列全长1317 bp,其编码蛋白质由439个氨基酸组成,相对分子质量为46.659 kD,等电点为5.30。稗草与同处禾本科的Dichanthelium oligosanthes (OEL23409.1: 8-249)的HPPD蛋白进化程度最为相近。EcHPPD三级建模蛋白结构由两条链构成,有2个Fe2+结合位点,并能与吡唑特活性中心骨架通过氢键相互作用。EcHPPD可能与HGO、HPT1、TAT3、AT5G36160、TAT7等11个蛋白产生互作。本研究报道了EcHPPD基因序列并对其进行了生物信息学分析,为创制新的HPPD抑制剂提供理论依据。
韩进财, 罗丁峰, 柏浩东, 李祖任. 稗草EcHPPD基因的克隆及生物信息学分析[J]. 中国农学通报, 2024, 40(3): 87-94.
HAN Jincai, LUO Dingfeng, BAI Haodong, LI Zuren. EcHPPD Gene of Barnyard Grass: Cloning and Bioinformatics Analysis[J]. Chinese Agricultural Science Bulletin, 2024, 40(3): 87-94.
| Primer name | Primer sequence(5’-3’) | Use of primers | 
|---|---|---|
| HPPD4-ZJ | Forward: TTCCACCACGTSGAGYTCTG Reverse: TCRTCCTTCTCCATGCACCC | Fragmen cloning | 
| HPPD4-5GSP1 | CGACGATGTGGTCGAACCGCCTG | 5’RACE the first round of amplification | 
| HPPD4-5GSP2 | GTAGCTGACGTAGCGGAGCACGAC | 5’RACE Second round of amplification | 
| HPPD4-3GSP1 | TGCTCGCCAACAACTCCGAGACC | 3’RACE the first round of amplification | 
| HPPD4-3GSP2 | GCCGCAGCCAGATTCAGACGTACC | 3’RACE Second round of amplification | 
| R=A/G Degenerate bases were underlined, degenerate primers Y=C/T; R=A/G; | ||
| Primer name | Primer sequence(5’-3’) | Use of primers | 
|---|---|---|
| HPPD4-ZJ | Forward: TTCCACCACGTSGAGYTCTG Reverse: TCRTCCTTCTCCATGCACCC | Fragmen cloning | 
| HPPD4-5GSP1 | CGACGATGTGGTCGAACCGCCTG | 5’RACE the first round of amplification | 
| HPPD4-5GSP2 | GTAGCTGACGTAGCGGAGCACGAC | 5’RACE Second round of amplification | 
| HPPD4-3GSP1 | TGCTCGCCAACAACTCCGAGACC | 3’RACE the first round of amplification | 
| HPPD4-3GSP2 | GCCGCAGCCAGATTCAGACGTACC | 3’RACE Second round of amplification | 
| R=A/G Degenerate bases were underlined, degenerate primers Y=C/T; R=A/G; | ||
| ddH2O | 17 μL | 
|---|---|
| 2×Phanta Max Buffer | 25 μL | 
| dNTP Mix (10 mmol/L each) | 1 μL | 
| Template DNA | 2 μL | 
| primer1 (10 μmol/L) | 2 μL | 
| primer2 (10 μmol/L) | 2 μL | 
| Phanta Max Super-Fidelity DNA Polymease(1 U/μL) | 1 μL | 
| ddH2O | 17 μL | 
|---|---|
| 2×Phanta Max Buffer | 25 μL | 
| dNTP Mix (10 mmol/L each) | 1 μL | 
| Template DNA | 2 μL | 
| primer1 (10 μmol/L) | 2 μL | 
| primer2 (10 μmol/L) | 2 μL | 
| Phanta Max Super-Fidelity DNA Polymease(1 U/μL) | 1 μL | 
 
												
												 
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